Применение магнитно-резонансной томографии и спектроскопии для характеристики функциональных и метаболических изменений мозга в ранний восстановительный посткоммоционный период

• Автор: Дроздов, Константин Анатольевич
• Шифр специальности: 03.03.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Санкт-Петербург
• Количество страниц: 126 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
Список сокращений
ВВЕДЕНИЕ
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Глава 1. Использование магнитно-резонансных методов для характеристики структурных, функциональных и биохимических изменений в головном мозге крыс
1.1. Явление ядерно-магнитного резонанса
1.2. ЯМР-спектроскопия биологических жидкостей
1.3. МРТ в экспериментальных исследованиях головного мозга

1.4. МРТ в экспериментальных исследованиях головного мозга крыс
Глава 2. Повреждения нейронов и механизмы саморегуляции
2.1. Ишемия головного мозга крыс
2.2. Черепно-мозговая травма
2.3. Локальная тканевая гипоксия
2.4. Физиологические и метаболические эффекты а-липоевой
кислоты
Глава 3. Степень неблагоприятного влияния постоянного магнитного
поля на биологические объекты
РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
Глава 4. Материалы и методы исследования
4.1. Экспериментальные животные
4.2. Модель черепно-мозговой травмы
4.3. Магнитно-резонансная томография
4.4. ЯМР-спектроскопия мочи и плазмы крови крыс

4.5. X-ray флуоресцентная томография
4.6. Гистологические методы
4.7. Оценка функциональной активности капилляров микрососудистого русла головного мозга
4.8. Электронная микроскопия
4.9. Модель определения степени опасности постоянного магнитного
поля для биологических объектов
4.10. Методы статистической обработки результатов
Глава 5. Магнитно-резонансное исследование головного мозга интактных крыс
5.1. Магнитно-резонансная томография структур здорового
мозга крыс
5.2. Сосуды головного мозга крыс
5.3. Желудочки головного мозга крыс
5.4. Артефакты и отклонения от нормы
Заключение к Главе
Г лава 6. Острая реакция головного мозга крыс на черепно-мозговую
травму
6.1. Магнитно-резонансная томография структурных изменений
6.2. Гистологическое исследование
6.3. Выживание крыс и моторная функция
6.4. Стрессорная активация организма
6.5. Содержание микроэлементов в повреждённой мозговой такни
Заключение к Главе
Глава 7. Недельный мониторинг динамики развития изменений в
головном мозге крыс после черепно-мозговой травмы
7.1. Вариабельность посттравматических процессов
7.2. Последовательность изменения размера гематомы и перифокального отёка после черепно-мозговой травмы
7.3. Динамика посттравматического изменения мозговых желудочков
7.4. Состояние капилляров головного мозга
7.5. Способ неинвазивного определения микрососудистого кровотока
Заключение к Главе
Глава 8. Роль а-липоевой кислоты как биологического регулятора физиологической защиты тканей головного мозга крыс при черепномозговой травме
Заключение к Главе
Глава 9. Влияние постоянного ультрамощного магнитного поля на
гаметы, зиготы и эмбрионы морского ежа
Глава 10. Обсуждение результатов исследования
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

мозг декапитированных животных извлекался, а далее при исследовании относительного содержания помещался в раствор сахарозы на срок 24 ч, после чего замораживался при температуре -120С, при исследовании количественного содержания микроэлементов головной мозг замораживался сразу после извлечения.
В первом случае мозг исследовался по следующей методике (Klockenkamper, 1997): после заморозки разрезался в микротоме на слои толщиной 50 мкм. Для проведения X-ray спектрального анализа срезы помещали на держатель из оргстекла.
Для получения данных о количественном содержании элементов (Serpa, 2005; 2006) замороженный мозг разделялся пластиковым ножом на секции соответствующие левой и правой височной долям, мозг травмированных животных в правой височной доле также разделялся на две секции соответствующие посттравматическому отёку и внутримозговой гематоме (Рис. 6.1). Навески образцов помещали в тефлоновые автоклавы, вносили раствор скандия (100 мкг/г), добавляли 1 мл концентрированной азотной кислоты и разлагали в микроволновом реакторе UltraClave (Milestone) 30 мин. Из полученного раствора отбирали 20 мкл, наносили на подложку из органического стекла, высушивали.
Содержание Р, S, К, Pb, Са, Fe, и Zn в полученных образцах определяли на рентгенофлуоресцентном анализаторе TXRF 8030С (FEI Company, Германия). Время измерения 500 с. Источники возбуждения WLp, МоКа, WBr32. Точность и правильность анализа контролировали по стандартному образцу БОк-2 (мышечной ткани байкальского окуня).
4.6. Гистологические методы
Тип и локализацию нарушений, установленных на МР-томограммах, контролировали гистологически. После забоя животных хлороформом мозг извлекался и фиксировался 4%-м раствором параформа при температуре